在生物醫學試驗中常常會用到細胞系，指原代細胞培育物經傳代成功后所繁衍的細胞群體。也指可長期連續傳代的培育細胞。細胞系是經過細胞傳代或續代培育是將細胞從現有的培育物分隔或分出來開端新的培育，并參加新鮮培育液來促進擴增的常用手法。可是細胞系與新分離的或原代細胞的培育條件相類似，但也有一些根本不同的當地：

（1）每個細胞系需求其特定的成長因子混合物

（2）與原代細胞比較，它們的成長需求更嚴密的監測，由于使它們無限成長的突變同時也會形成它們很快到達過度成長。因而，當細胞系成長到了簡直覆蓋整個培育器皿底部，也便是90%的密度時，細胞需求重懸洗滌用于試驗或凍存以備將來運用，或許重新接種到新的培育器皿進一步擴增。

細胞換液注意事項：

首要要注意細胞培育液的色彩，富含營養的新鮮培育液由于添加了pH指示劑酚紅故為透明橙色。當細胞耗盡培育液中的營養成分時，開端在培育物中堆集廢物和酸性物質，下降pH值。因而，許多細胞培育液含有酚紅，當培育物呈酸性時會將培育液色彩由橙色變為。培育液需在變黃之前替換。當酚紅變為粉紅色時，說明培育基pH偏堿，不利于細胞健康成長。這時或許需求改變二氧化碳濃度并替換培育液。許多貼壁細胞系可天然附著于無涂層的塑料上。

因而，塑料細胞培育板如培育皿或六孔板常常用于傳代細胞。塑料的細胞培育瓶也常常用到，如T25的細胞培育瓶，常用于擴增培育數目少的細胞或許開端培育成長緩慢的細胞系。T75細胞培育瓶常用在培育擴增速度較快的細胞系或用于成長超越T25培育瓶容量的很多細胞。在搬運貼壁細胞時，要先剪切掉細胞上與和塑料結合的蛋白。因而，消化酶胰酶常用于消化細胞。控制胰酶消化的時間很重要，由于假如處理時間過長會損壞細胞外表的蛋白。細胞培育液能中和胰酶。

所以在胰酶消化前常用磷酸緩沖液或PBS洗滌細胞。EDTA，一種鈣螯合劑有時候也用于提高胰酶的蛋白水解功能。為擴增細胞克隆，將新鮮傳代的細胞培育于細胞培育箱中，挑選適合該細胞成長條件，一般為溫度37度，二氧化碳5％和濕度95%。

傳代的不同運用：

人胚胎干細胞是一類有必要傳代的細胞。它們一般與小鼠成纖維細胞MEF共培育，后者能供給協助干細胞堅持其多能性的因子。成善于養殖細胞上的干細胞到了適宜的發育階段時需挑出來。可用微型移液管挑出或用玻璃工具輕輕將其刮下然后接種于新的培育液中進行擴增。有一些細胞系對酶消化靈敏，或許貼壁很緊無法運用胰酶處理來重懸。細胞刮常用來輕輕將細胞從培育板的底部刮下來。假如細胞貼壁特別緊，可參加培育液或恰當溶液后用血清吸管用力刮擦。運用該方法時要當心，細胞比較脆弱，容易在這種機械剝離的方法中受損。為了更快并可重復性的很多擴增細胞到超越單層培育瓶容量的規模，可以運用多層培育瓶，它的培育量可達單層培育瓶的3-5倍。

細胞傳代的操作步驟

首要，重要的是要清楚細胞需求監測的頻頻程度，這取決于該細胞的擴增速度。現在培育液為亮橙色，再觀察其它成長情況。如培育液是否污濁-如污濁則或許有污染, 細胞的巨細和密度以及細胞的整體質量。假如細胞密度到達90%，吸去細胞培育液，用無鈣離子和鎂離子的磷酸緩沖液洗滌。然后參加胰酶，置于37攝氏度約5分鐘，承認細胞脫壁后，參加新鮮細胞培育液停止胰酶的水解。將懸浮的細胞搬運到錐形管離心。細胞離心下來后，當心棄去上清，重懸細胞于新鮮培育液。計數收集到的細胞然后依據適宜密度接種細胞當即進行擴增或用于將來擴增。